ПОЛИТРАВМА / POLYTRAUMA

Цель — сравнительная оценка составов метабиотиков и их показаний к применению, позволяющая определить наиболее предпочтительный вариант для наилучшего лечения дисбиоза кишечника у пациентов в острых и хронических критических состояниях.

Материалы и методы. Из баз данных PubMed и Google Scholar (95 работ), а также научной электронной библиотеки (eLIBRARY.ru — 23 источника) выбраны и проанализированы результаты 118 научных исследований по проблеме дисбиоза кишечника и методов его коррекции.

Результаты. Учитывая сложность механизмов патогенеза дисбиоза кишечника и его многочисленные особенности у больных в острых и хронических критических состояниях, необходимо нивелировать данные проявления многокомпонентным метабиотиком для уменьшения выраженности уже имеющегося патологического процесса с целью направленного его купирования. Целесообразно, чтобы в нем присутствовали непатогенные бактерии, в частности лизат штамма Streptococcus thermophilus, доказательно содействующий синергизму лечебных эффектов всех штаммов.

Выводы. У больных, находящихся в острых и хронических критических состояниях существуют грубые нарушения качественного и количественного

состава микробиоты кишечника, которые активизируют в нем инвертируемые метаболические процессы и эволюционируют его дисфункцию, что не может способствовать улучшению их общего состояния.

Механизм патогенеза дисбиоза кишечника у больных, находящихся в острых и хронических критических состояниях, сложен и имеет многочисленные особенности.

При дисбиозе кишечника у больных, находящихся в острых и хронических критических состояниях, наиболее стремительно и сильно страдают бифидобактерии и лактобактерии.

В составе метабиотика, применяемого для адресно-патогенетического и продуктивного купирования дисбиоза кишечника у больных, находящихся в острых и хронических критических состояниях, должны присутствовать структурные и клеточные компоненты, а также внутриклеточное содержимое не только бифидобактерий и лактобактерий, но и непатогенных бактерий, содействующих каталитическому синергизму лечебных эффектов используемых штаммов.

Для обеспечения эффективности лечебного действия применяемого метабиотика в отношении нивелирования дисбиоза у больных, находящихся в острых и хронических критических состояниях, необходимо наличие в его составе многокомпонентного комплекса структурных и клеточных компонентов бифидобактерий, лактобактерий и других непатогенных бактерий в связи с многообразием и разнонаправленностью их терапевтических эффектов.

Применение метабиотика Нутризет у больных в острых и хронических критических состояниях, страдающих дисбиозом кишечника, будет оперативно и действенно содействовать возрастанию количества полезных бактерий и снижению популяции патогенных микроорганизмов, что, в свою очередь, позволит не только редуцировать патологический процесс, но и продуктивно реконструировать микрофлору кишечника для его позитивного функционирования.

Parenteral and enteral nutrition: national guidelines. Edited by Petrikov SS, et al. 2nd edition, revised and extended. Moscow: GEOTAR-Media, 2023; 1166 p. Russian (Парентеральное и энтеральное питание : национальное руководство / гл. редакторы: С. С. Петриков и др. 2-е изд., пепераб. и доп. Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2023. 1166 с.)

Mazurok VA, Golovkin AS, Bautin AE, Gorelov II, Belikov VL, Slivin O A. Gastrointestinal tract in critical conditions: the first suffers, the last to whom attention is paid. Bulletin of Intensive Care. 2016; (2): 28-37. Russian (Мазурок В.., Головкин А., Баутин А. Е., Горелов И. И., Беликов В. Л., Сливин О. А. Желудочно-кишечный тракт при критических состояниях: первый страдает, последний, кому уделяют внимание // Вестник интенсивной терапии. 2016. № 2. С. 28-37)

Grechko AV, Buyakova IV, Beloborodova NV. Microbiota dysfunction in patients with brain damage in a chronic critical condition. Russian Neurological Journal. 2022; 27(1): 94-104. Russian (Гречко А. В., Буякова И. В., Белобородова Н. В. Дисфункция микробиоты у пациентов с повреждением головного мозга, находящихся в хроническом критическом состоянии // Российский неврологический журнал. 2022. Т. 27, № 1. С. 94-104)

Zandalasini M, Pelizzari L, Ciardi G, Giraudo D, Guasconi M, Paravati S, et al. Bowel dysfunctions after acquired brain injury: a scoping review. Front Hum Neurosci. 2023;17:1146054. doi: 10.3389/fnhum.2023.1146054

Beloborodova NV, Grechko AV, Olenin AYu. Metabolomic discovery of microbiota dysfunction as the cause of pathology. Metabolomics - New Insights into Biology and Medicine. 2019. https://www.researchgate.net/publication/334240658_Metabolomic_Discovery_of_Microbiota_Dysfunction_as_the_Cause_of_Pathology

Guo X, Huang C, Xu J, Xu H, Liu L, Zhao H, et. al. Gut Microbiota is a potential biomarker in inflammatory bowel disease. Front Nutr. 2022;8:818902. doi: 10.3389/fnut.2021.818902

Evans T, Ali U, Anderton R, Raby E, Manning L, Litton E. Lower gut dysbiosis and mortality in acute critical illness: a systematic review and meta-analysis. Intensive Care Med Exp. 2023;11(1):6. doi: 10.1186/s40635-022-00486-z

Sekino N, Selim M, Shehadah A. Sepsis-associated brain injury: underlying mechanisms and potential therapeutic strategies for acute and long-term cognitive impairments. J. Neuroinflammation. 2022; 19(1):101. doi: 10.1186/s12974-022-02464-4

Beloborodova NV, Moroz VV, Bedova AY, Osipov AA, Sarshor YN, Chemevskaya EA. Participation of aromatic microbial metabolites in the development of severe infection and sepsis. Anesthesiology and resuscitation. 2016; 61(3): 202-208. Russian (Белобородова Н. В., Мороз В. В., Бедова А. Ю., Осипов А. А., Саршор Ю. Н., Черневская Е. А. Участие ароматических микробных метаболитов в развитии тяжелой инфекции и сепсиса // Анестезиология и реаниматология. 2016. Т. 61, №3. С. 202–208)

Beloborodova NV, Ostrovа IV. Sepsis-associated encephalopathy (review). General resuscitation. 2017; 13(5): 121-139. Russian (Белобородова Н. В., Острова И .В. Сепсис-ассоциированная энцефалопатия (обзор) // Общая реаниматология. 2017. Т 13, № 5. С. 121–139)

Intensive therapy. National leadership. Edited by I.B. Zabolotskikh, DN. Protsenko 2nd edition, revised and supplemented. Moscow: Geotar-medicine, 2021. 2208 p. Russian (Интенсивная терапия : национальное руководство : в 2 томах / под редакцией И. Б. Заболотских, Д. Н. Проценко. 2-е изд., перераб. и доп. Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2021. 2208 с.)

Parfenov AL, Razzhivin VP, Petrova MV. Chronic critical illness: current aspects of the problem (review). Modern technologies in medicine. 2022; 14(3): 70-83. Russian (Парфенов А. Л., Разживин В. П., Петрова М. В. Хроническое критическое заболевание: современные аспекты проблемы (обзор) // Современные технологии в медицине. 2022. Т. 14, № 3. С. 70-83)

Beloborodova NV. Microbiota metabolism under critical conditions (review and postulates). General resuscitation. 2019; 15(6): 62-79. Russian (Белобородова Н. В. Метаболизм микробиоты при критических состояниях (обзор и постулаты) // Общая реаниматология. 2019. Т. 15, № 6. С. 62–79)

Sirota GG, Kirilina SI, Sirota VS, Lebedeva MN, Ivanova EYu, Pervukhin SA, et al. Intestinal and nutritional insufficiency in complicated cervical spine injury. Polytrauma. 2018; (3): 20-26. Russian (Сирота Г. Г., Кирилина С. И., Сирота В. С., Лебедева М. Н., Иванова Е. Ю., Первухин С. А., и др. Кишечная и нутритивная недостаточность при осложненной травме шейного отдела позвоночника // Политравма. 2018. №. 3. С. 20-26)

Baleev MS, Ryabkov MG, Perlmutter OA, Fraerman AP, Sheiko GE, Smirnov II, et al. Digestive tract dysfunction in the acute period of spinal cord injury (literature review). Polytrauma. 2021; (3): 82-90. Russian (Балеев М. С., Рябков М. Г., Перльмуттер О. А. Фраерман А. П., Шейко Г. Е., Смирнов И. И. и др. Дисфункция пищеварительного тракта в остром периоде травмы спинного мозга (обзор литературы) // Политравма. 2021. № 3. С. 82-90)

Iwasaki M, Akiba Y, Kaunitz JD. Recent advances in vasoactive intestinal peptide physiology and pathophysiology: focus on the gastrointestinal system. F1000Research. 2019; 8: F1000 Faculty Rev-1629

Kigerl KA, Popovich PG. Gut dysbiosis and recovery of function after spinal cord injury. Oxford Research Encyclopedia of Neuroscience. 2019; 15(1): 60-67

Eldahan KC, Rabchevsky AG. Autonomic dysreflexia after spinal cord injury: systemic pathophysiology and methods of management. Autonomic Neuroscience. 2018; 209:59-70

Steensgaard R, Bonne S, Wojke P, Kasch H. SCI-SCREEN: a more targeted nutrition screening model to detect spinal cord-injured patients at risk of malnutrition. Rehabil Nurs. 2019; 44(1):11-19

White AR, Holmes GM. Investigating neurogenic bowel in experimental spinal cord injury: where to begin? Neural regeneration research. 2019; 14(2):222-231

Bernardi M, Fedullo AL, Bernardi E. Diet in neurogenic bowel management: A viewpoint on spinal cord injury. World J Gastroenterol. 2020; 26(20):2479-2497

Montesinos-Magraner L, Castellano-Tejedor C, Frias A, Launois P, Rojas-Cuotto K, González-Viejo MA.Spanish validation of the autonomic standards assessment form in spinal cord injuries. Rehabilitacion (Madr). 2019; 53(1): 20-27

Bazzocchi G. Changes in gut microbiota in the acute phase after spinal cord injury correlate with severity of the lesion. Scientific reports. 2021. 11(1): 1-13

Qi Z, Middleton JW, Malcolm A. Bowel dysfunction in spinal cord injury. Current gastroenterology reports. 2018; 20(10):47-58

White AR, Holmes GM. Anatomical and functional changes to the colonic neuromuscular compartment after experimental spinal cord injury. Journal of Neurotrauma. 2018; 35(9):1079-1090

Sepsis: classification, clinical diagnostic concept and treatment: manual. Edited by BR Gelfand. 4th edition, supplemented and revised. Moscow: MIA, 2017. 214 р. Russian (Сепсис: классификация, клинико-диагностическая концепция и лечение: практическое руководство / под ред. Б. Р. Гельфанда. 4-е изд., доп. и перераб. Москва : МИА. 2017. 214 с.)

Fung C, Vanden Berghe P. Functional circuits and signal processing in the enteric nervous system. Cell Mol Life Sci. 2020; 77(22):4505-4522

Ivashkin VT, Ivashkin KV. Intestinal microbiome as a factor in the regulation of the enteral and central nervous system. Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. 2017; 27(5): 11-19. Russian (Ивашкин В. Т., Ивашкин К. В. Кишечный микробиом как фактор регуляции деятельности энтеральной и центральной нервной системы // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2017. Т. 27, № 5. С. 11-19)

Lussi C, Frotzler A, Jenny A, Schaefer DJ, Kressig RW, Scheel-Sailer A. Nutritional blood parameters and nutritional risk screening in patients with spinal cord injury and deep pressure ulcer-a retrospective chart analysis. Spinal Cord. 2018;56(2):168-175. doi: 10.1038/s41393-017-0016-4

Evseev MA, Fomin VS, Nikitin VE. Pathogenetic aspects of the development of enteral insufficiency syndrome in the postoperative period. Annals of Surgery. 2018; 23(1): 5-13. Russian (Евсеев М. А., Фомин В. С., Никитин В. Е. Патогенетические аспекты развития синдрома энтеральной недостаточности в послеоперационном периоде // Анналы хирургии. 2018. Т. 23, № 1. С. 5-13)

Shenderov BA, Tkachenko EI, Lazebnik LB, Ardatskaya MD, Sinitsa AV, Zakharchenko MM. Metabiotics is a new technology for the prevention and treatment of diseases associated with microecological disorders in the human body. Experimental and clinical gastroenterology. 2018; 151(3): 83-92. Russian (Шендеров Б. А., Ткаченко Е. И., Лазебник Л. Б., Ардатская М. Д., Синица А. В., Захарченко М. М. Метабиотики - новая технология профилактики и лечения заболеваний, связанных с микроэкологическими нарушениями в организме человека // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2018. № 151(3). С. 83-92)

Shenderov BA, Tkachenko EI, Zakharchenko MM, et al. Metabiotics: prospects, challenges and opportunities. Medical alphabet. 2019. Vol. 2(13). P. 43-48. Russian. (Шендеров Б.А., Ткаченко Е.И., Захарченко М.М. и др. Метабиотики: перспективы, вызовы и возможности. Медицинский алфавит. 2019. № 2(13). С. 43-48)

Salminen S, Collado MC, Endo A, Hill C, Lebeer S, Quigley EMM, et al. The International Scientific Association of Probiotics and Prebiotics (ISAPP) consensus statement on the definition and scope of postbiotics. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2021;18(9):649-667. doi: 10.1038/s41575-021-00440-6

Vinderola G, Sanders ME, Salminen S. The Concept of Postbiotics. Foods. 2022; 11(8):1077

Shenderov BA. Metabiotics: novel idea or natural development of probiotic conception. Microb. Ecol. Health Dis. 2013; 24:203–299

Plotnikova EYu, Gracheva TYu. Metabiotics - a comprehensive solution to dysbiotic problems in various diseases. RMG. 2018; 5(II):72-76. Russian (Плотникова Е. Ю., Грачева Т. Ю. Метабиотики - комплексное решение дисбиотических проблем при различных заболеваниях // РМЖ. 2018. № 5(II). С. 72-76)

Żółkiewicz J, Marzec A, Ruszczyński M, Feleszko W. Postbiotics-A Step beyond pre- and probiotics. Nutrients. 2020;12(8):2189. doi: 10.3390/nu12082189

Ma L, Tu H, Chen T. Postbiotics in human health: a narrative review. Nutrients. 2023;15(2):291

Cuevas-González PF, Liceaga AM, Aguilar-Toalá JE. Postbiotics and paraprobiotics: From concepts to applications. Food Res Int. 2020;136:109502

Microbiota. Ed. EL, Nikonova and EL. Popova. Moscow: Media Sphere. 2019. P. 20-30. Russian (Микробиота / под ред. Е. Л. Никонова и Е. Н. Поповой. Москва : Издательство Медиа Сфера, 2019. С. 20–30)

Kaibysheva VO. Probiotics from the standpoint of evidence-based medicine. Evidence-based gastroenterology. 2019; 8 (3): 45-54. Russian (Кайбышева ВО. Пробиотики с позиции доказательной медицины // Доказательная гастроэнтерология. 2019. Т.8, № 3. С. 45–54)

Adak A, Han G. Verständnis der Darmmikrobiota und ihrer Funktionalität. Cell Mol Life Sci. 2019;76:473-493

Shenderov BA, et al. Metabiotics. Cham: Springer International Publishing, 2020. 123 с.

Malkoch AV, Belmer SV Intestinal microflora and the importance of prebiotics for its functioning. Attending physician. 2006; (4): 60-65. Russian (Малкоч АВ, Бельмер СВ. Кишечная микрофлора и значение пребиотиков для ее функционирования // Лечащий врач. 2006. № 4. С. 60–65)

Funk IA, Irkitova AN. Biotechnological potential of bifidobacteria. Acta Biologica Sibirica. 2016; 2(4):67-79. Russian (Функ И. А., Иркитова А. Н. Биотехнологический потенциал бифидобактерий // Acta Biologica Sibirica. 2016. № 2(4). С 67–79)

Bottacini F, Ventura M, van Sinderen D, O'Connell Motherway M. Diversity, ecology and intestinal function of bifidobacteria. Microb Cell Fact. 2014;13 (Suppl 1):S4. doi: 10.1186/1475-2859-13-S1-S4

De Vuyst L, Leroy F. Cross-feeding between bifidobacteria and butyrate-producing colon bacteria explains bifdobacterial competitiveness, butyrate production, and gas production. Int. J. Food Microbiol. 2011;149:73-80

Turroni F, van Sinderen D, Ventura M. Genomics and ecological overview of the genus. Bifidobacterium. Int. J. Food Microbiol. 2011;149:37-44

Russell DA, Ross RP, Fitzgerald GF, Stanton C. Metabolic activities and probiotic potential of bifidobacteria. Int J Food Microbiol. 2011;149(1):88-105. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2011.06.003

Novik GI. Bifidobacteria: scientific foundations of practical use. Health and environmental concerns. 2006; (4):144-151. Russian (Новик Г. И. Бифидобактерии: научные основы практического использования // Проблемы здоровья и экологии. 2006. № 4. С. 144-151)

O'Callaghan A, and Van Sinderen D. Bifidobacteria and their role as members of the human gut microbiota. Front. Microbiol. 2016; 7:925

Utebaeva MA, Burmasova MA, Sysoeva MA. Prospects for the use of bifidobacteria in functional foods and medicines. News of universities. applied chemistry and biotechnology. 2016. 6(4): 100-109. Russian (Утебаева М. А., Бурмасова М. А., Сысоева М. А. Перспективы использования бифидобактерий в продуктах функционального питания и лекарственных средствах // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2016. Т.6, № 4. С.100-109)

Turroni F, Marchesi JR, Foroni E, Gueimonde M, Shanahan F, Margolles A, et al. Microbiomic analysis of the bifidobacterial population in the human distal gut. ISME J. 2009; 3(6):745-751. doi: 10.1038/ismej.2009.19

Chen J, Chen X, Ho CL. Recent development of probiotic Bifidobacteria for treating human diseases. Front. Bioeng. Biotechnol. 2021; 9: 770248

Arboleya S, Watkins C, Stanton C, Ross RP. Gut Bifidobacteria populations in human health and aging. Front Microbiol. 2016;7:1204. doi: 10.3389/fmicb.2016.01204

Zhao Y, Yu YB. Intestinal microbiota and chronic constipation. Springerplus. 2016;5(1):1130. doi: 10.1186/s40064-016-2821-1

Clarke G, Stilling RM, Kennedy PJ, Stanton C, Cryan JF, Dinan TG. Minireview: gut microbiota: the neglected endocrine organ. Mol Endocrinol. 2014;28(8):1221-1238. doi: 10.1210/me.2014-1108

Rivière A, Selak M, Lantin D, Leroy F, De Vuyst L. Bifidobacteria and butyrate-producing colon bacteria: importance and strategies for their stimulation in the human gut. Front Microbiol. 2016; 7:979. doi: 10.3389/fmicb.2016.00979

Yakovenko EP, Strokova TV, Ivanov AN, Yakovenko AV, Gioeva IZ, Aldiyarova MA. Efficacy of a probiotic containing Bifidobacterium longum BB-46 and Enterococcus faecium ENCfa-68 in the treatment of post-infectious irritable bowel syndrome. A prospective randomized comparative study. Therapeutic Archive. 2022; 94(2): 180-187. Russian (Яковенко Э. П., Строкова Т. В., Иванов А.Н., Яковенко А. В., Гиоева И. З., Алдиярова М. А. Эффективность пробиотика, содержащего Bifidobacterium longum BB-46 и Enterococcus faecium ENCfa-68, в терапии постинфекционного синдрома раздраженного кишечника. Проспективное рандомизированное сравнительное исследование // Терапевтический архив. 2022. Т.94, № 2.С. 180–187)

Qing G, Shiyu, L, Xie Y., Xu Z, Mengge L, Zhang Q, et al. Bifidobacterium longum as an orally administered carrier of LL-37 to treat bacterial diarrhea. Journal of pharmaceutical and biomedical sciences. 2017; 7: 141-152

Finamore A, Roselli M, Donini L, Brasili DE, Rami R, Carnevali P, et al. Supplementation with Bifidobacterium longum Bar33 and Lactobacillus helveticus Bar13 mixture improves immunity in elderly humans (over 75 years) and aged mice. Nutrition. 2019;63-64:184-192. doi: 10.1016/j.nut.2019.02.005

Bukharin OV, Ivanova EV, Perunova NB, Chainikova IN. The role of bifidobacteria in the formation of human immune homeostasis. Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology. 2015; N6. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/rol-bifidobakteriy-v-formirovanii-immunnogo-gomeostaza-cheloveka (date of circulation: 23.08.2024). Russian (Бухарин О. В., Иванова Е. В., Перунова Н.Б., Чайникова И. Н. Роль бифидобактерий в формировании иммунного гомеостаза человека // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2015. № 6. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/rol-bifidobakteriy-v-formirovanii-immunnogo-gomeostaza-cheloveka (дата обращения: 23.08.2024)

Pokusaeva K, Fitzgerald GF, van Sinderen D. Carbohydrate metabolism in bifidobacteria. Genes Nutr. 2011; 6:285-306

LeBlanc JG, Chain F, Martín R, Bermúdez-Humarán LG, Courau S, Langella P. Beneficial effects on host energy metabolism of short-chain fatty acids and vitamins produced by commensal and probiotic bacteria. Microb Cell Fact. 2017;16(1):79. doi: 10.1186/s12934-017-0691-z

Din AU, Hassan A, Zhu Y, Zhang K, Wang Y, Li T, et al. Inhibitory effect of Bifidobacterium bifidum ATCC 29521 on colitis and its mechanism. J Nutr Biochem. 2020;79:108353. doi: 10.1016/j.jnutbio.2020.108353

Krumbeck JA, Rasmussen HE, Hutkins RW, Clarke J, Shawron K, Keshavarzian A, et al. Probiotic Bifidobacterium strains and galactooligosaccharides improve intestinal barrier function in obese adults but show no synergism when used together as synbiotics. Microbiome. 2018;6(1):121. doi: 10.1186/s40168-018-0494-4

Guglielmetti S, Mora D, Gschwender M, Popp K. Randomised clinical trial: Bifidobacterium bifidum MIMBb75 significantly alleviates irritable bowel syndrome and improves quality of life - a double-blind, placebo-controlled study. Aliment Pharmacol Ther. 2011;33(10):1123-1132. doi: 10.1111/j.1365-2036.2011.04633.x

Cronin M, Morrissey D, Rajendran S, El Mashad SM, Van Sinderen D, O'sullivan GC, et al. Orally administered bifidobacteria as vehicles for delivery of agents to systemic tumors. Mol. Ther. 2010; 18:1397-1407

Mu Q, Tavella VJ, Luo XM. Role of Lactobacillus reuteri in human health and diseases. Front. Microbiol. 2018; 9:757-764

Yu Z, Chen J, Liu Y, Meng Q, Liu H, Yao Q, et al. The role of potential probiotic strains Lactobacillus reuteri in various intestinal diseases: new roles for an old player. Front Microbiol. 2023;14:1095555. doi: 10.3389/fmicb.2023.1095555

Kafarskaya LI, Inzhevatkina SM, Volodin NN. Therapeutic potential of probiotics: optimization of the immune response and restoration of the intestinal ecosystem. Child dietetics issues. 2005; 3(1): 72-75. Russian (Кафарская Л. И., Инжеваткина С. М., Володин Н. Н. Терапевтический потенциал пробиотиков: оптимизация иммунного ответа и восстановление экосистемы кишечника // Вопросы детской диетологии. 2005. Т. 3, № 1. С. 72–75)

Lenzner AA, Lenzner HP, Mickelsaar ME, et al. Lactoflora and colonization resistance. Antibiotics and chemotherapy. 1987; (3):73-177. Russian (Ленцнер А. А., Ленцнер Х. П., Микельсаар М. Э. и др. Лактофлора и колонизационная резистентность // Антибиотики и химиотерапия. 1987. № 3. С. 173–177)

Ershova IB, Gavrysh LI, Kunegina EN, et al. The importance of lactobacilli in the human body and the tactics of the correct choice of eubiotics. News of medicine and pharmacy. 2007; 17: 20-21. Russian (Ершова И. Б., Гаврыш Л.И., Кунегина Е.Н. и др. Значение лактобактерий в организме человека и тактика правильного выбора эубиотиков // Новости медицины и фармации. 2007. № 17. С. 20–21)

Glushanova NA. Biological properties of lactobacilli. Bulletin of Siberian Medicine. 2003; (4): 50-58. Russian. (Глушанова Н. А. Биологические свойства лактобацилл // Бюллетень сибирской медицины. 2003. № 4. С 50-58)

Zakharova IN, Berezhnaya IV, Klimov LYa, Kasyanova AN, Dedikova OV, Koltsov KA. Probiotics in respiratory diseases: are there any ways of interaction and prospects for use? Medical Council. 2019; (2): 173-182. Russian (Захарова И. Н., Бережная И. В., Климов Л. Я., Касьянова А. Н., Дедикова О. В., Кольцов К. А. Пробиотики при респираторных заболеваниях: есть ли пути взаимодействия и перспективы применения? // Медицинский совет. 2019. № 2. С. 173-182)

Ermolenko EI. Immunomodulatory effect of probiotic bacteria in diseases of the gastrointestinal tract. Bulletin of St. Petersburg University. 2014; 11(4):5-18. Russian (Ермоленко Е. И. Иммуномодулирующее действие пробиотических бактерий при заболеваниях желудочно-кишечного тракта // Вестник Санкт-Петербургского университета. 2014. Т.11, № 4. С. 5-18)

Lamm ME. Current concepts in mucosal immunity. IV. How epithelial transport of IgA antibodies relates to host defense. Am. J. Physiol. 1998; 274(4): P. 614-617

Smeyanov VV, Korschunov VV, Bossart W, et al. Experimental and clinical immunomodulation activity of inactivated Lactobacillus acidophilus «Solco» preparations. J. Chemotherapy. 1993; 5.(1): 250-252

Khromova SS, Savina MI, Efimov BA, et al. Gut microflora and mechanisms of immunoregulation. Child dietetics issues. 2005; (3):1:92-96. Russian (Хромова С. С., Савина М. И., Ефимов Б. А. и др. Микрофлора кишечника и механизмы иммунорегуляции // Вопросы детской диетологии. 2005. Т. 3,

№ 1. С. 92–96)

Cross ML, Mortensen RR, Kudsk J, Gill HS. Dietary intake of Lactobacillus rhamnosus HNOO1 enhances production of both Th1 and Th2 cytokines in antigen-primed mice. Med Microbiol Immunol. 2002;191(1):49-53. doi: 10.1007/s00430-002-0112-7

Kekkonen RA, Lummela N, Karjalainen H, Latvala S, Tynkkynen S, Jarvenpaa S, et al. Probiotic intervention has strain-specific anti-inflammatory effects in healthy adults. World J Gastroenterol. 2008 Apr 7;14(13):2029-2036. doi: 10.3748/wjg.14.2029

Fong W, Li Q, Yu J. Gut microbiota modulation: a novel strategy for prevention and treatment of colorectal cancer. Oncogene. 2020; 39: 4925-4943

Dias AMM, Douhard R, Hermetet F, Regimbeau M, Lopez TE, Gonzalez D, et al. Lactobacillus stress protein GroEL prevents colonic inflammation. J Gastroenterol. 2021;56(5):442-455. doi: 10.1007/s00535-021-01774-3

Yu Z, Chen J, Liu Y, Meng Q, Liu H, Yao Q, et al. The role of potential probiotic strains Lactobacillus reuteri in various intestinal diseases: new roles for an old player. Front Microbiol. 2023;14:1095555. doi: 10.3389/fmicb.2023.1095555

Patrakeeva VP, Shtaborov VA. The role of nutrition and the state of intestinal microflora in the formation of metabolic syndrome. Obesity and metabolism. 2022;19(3):292-299. Russian (Патракеева В. П., Штаборов В. А. Роль питания и состояния микрофлоры кишечника в формировании метаболического синдрома // Ожирение и метаболизм. 2022. Т.19, № 3. С. 292-299)

Gurevich KG, Nikityuk DB, Nikonov EL, Zaborova VA, Veselova LV, Zolnikova OY. Role of probiotics and microbiota in digestion, nutrient metabolism, hormones, and hormonal maintenance. Preventive medicine. 2018; 21(3):45-50. Russian (Гуревич К. Г., Никитюк Д. Б., Никонов Е. Л., Заборова В. А., Веселова Л. В., Зольникова О. Ю. Роль пробиотиков и микробиоты в пищеварении, метаболизме нутриентов, гормонов и поддержании гормонального фона // Профилактическая медицина. 2018. Т. 21, № 3. С. 45 50)

Huang Y, Zheng Y. The probiotic Lactobacillus acidophilus reduces cholesterol absorption through the down-regulation of Niemann-Pick C1-like 1 in Caco-2 cells. Br. J. Nutr. 2010; 103(4):473-478

Shah N. Lactobacillus acidophilus and lactose intolerance: a review. ASEAN Food J. 1994; 9 (2):5-12

Tannock GW. The normal micro flora: new concepts in health promotion. Microbiol. Sciences. 1998; 5:10-18

Engevik MA, Ruan W, Esparza M, Fultz R, Shi Z, Engevik KA, et al. Immunomodulation of dendritic cells by Lactobacillus reuteri surface components and metabolites. Physiol Rep. 2021;9(2):e14719. doi: 10.14814/phy2.14719

Hoang TK, He B, Wang T, Tran DQ, Rhoads JM, Liu Y. Protective effect of Lactobacillus reuteri DSM 17938 against experimental necrotizing enterocolitis is mediated by Toll-like receptor 2. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2018;315(2):G231-G240. doi: 10.1152/ajpgi.00084.2017

Aller JM, Crowley SM, Low HT. Darmepithel: zentraler koordinator der immunität der schleimhaut. Die Trends von Immunol. 2019; 39:677-696

Agudelo-Ochoa GM, Valdes-Duque BE, Giraldo-Giraldo NA, et al. Darm-mikrobiota-profile bei kritisch kranken patienten, potentielle biomarker und variable des sepsis-risikos. Darmkeime. 2020; 12:1707610

Gouri Ezaz A, Richards David M, Rahimi Eric F. Systematischer Überblick über randomisierte kontrollierte Studien zu Probiotika, Präbiotika und Synbiotika bei entzündlichen Darmerkrankungen. Klinische und experimentelle Gastroenterologie. 2014; 7:473-487

Singhi SS, Kumar S. Probiotika bei kritisch kranken Kindern. Studie F1000 (Übersicht). 2014; 5:407-412

Bovbel IE. Current ideas about the gut microbiota and the possibility of effective use of probiotics in the practice of a pediatrician. Medical news. 2017; (2): 25-31. Russian (Бовбель И. Э. Современные представления о микробиоте кишечника и возможности эффективного применения пробиотиков в практике врача-педиатра // Медицинские новости. 2017. № 2. С. 25-31)

Lysates of probiotic bacteria - raw materials for functional nutrition : literary review on the topic. 2020. 30 p. URL: www.contract.artlife.ru. Russian (Лизаты пробиотических бактерий - сырье для функционального питания : литературный обзор по теме. 2020. 30 с. Режим доступа: www.contract.artlifе.ru)

Desaka N, Ota C, Nishikawa H, Yasuda K, Ishii N, Bito T, et al. Streptococcus thermophilus extends lifespan through activation of DAF-16-mediated antioxidant pathway in Caenorhabditis elegans. J Clin Biochem Nutr. 2022;70(1):7-13. doi: 10.3164/jcbn.21-56

Herviou P, Balvay A, Bellet D, Bobet S, Maudet C, Staub J, et al. Transfer of the integrative and conjugative element ICESt3 of streptococcus thermophilus in physiological conditions mimicking the human digestive ecosystem. Microbiol Spectr. 2023;11(3):e0466722. doi: 10.1128/spectrum.04667-22

Salini F, Iacumin L, Comi G, Dicks LMT. Thermophilin 13: in silico analysis Provides new insight in genes involved in bacteriocin production. Microorganisms. 2023;11(3):611. doi: 10.3390/microorganisms11030611

Roux E, Nicolas A, Valence F, Siekaniec G, Chuat V, Nicolas J, et al. The genomic basis of the Streptococcus thermophilus health-promoting properties. BMC Genomics. 2022;23(1):210. doi: 10.1186/s12864-022-08459-y

Kang X, Liang H, Luo Y, Li Z, He F, Han X, et al. Streptococcus thermophilus MN-ZLW-002 can inhibit pre-adipocyte differentiation through macrophage activation. Biol Pharm Bull. 2021;44(3):316-324. doi: 10.1248/bpb.b20-00335

Shimosato T, Tohno M, Sato T, Nishimura J, Kawai Y, Saito T, et al. Identification of a potent immunostimulatory oligodeoxynucleotide from Streptococcus thermophilus lacZ. Anim Sci J. 2009 Oct;80(5):597-604. doi: 10.1111/j.1740-0929.2009.00680.x

Dargahi N, Johnson J, Apostolopoulos V. Streptococcus thermophilus alters the expression of genes associated with innate and adaptive immunity in human peripheral blood mononuclear cells. PLoS One. 2020;15(2):e0228531. doi: 10.1371/journal.pone.0228531

Jensen H, Drømtorp SM, Axelsson L, Grimmer S. Immunomodulation of monocytes by probiotic and selected lactic Acid bacteria. Probiotics Antimicrob Proteins. 2015;7(1):14-23. doi: 10.1007/s12602-014-9174-2

Asarat M, Apostolopoulos V, Vasiljevic T, Donkor O. Short-chain fatty acids regulate cytokines and Th17/Treg cells in human peripheral blood mononuclear cells in vitro. Immunol Invest. 2016;45(3):205-222. doi: 10.3109/08820139.2015.1122613

Rossi F, Marzotto M, Cremonese S, Rizzotti L, Torriani S. Diversity of Streptococcus thermophilus in bacteriocin production; inhibitory spectrum and occurrence of thermophilin genes. Food Microbiol. 2013;35(1):27-33. doi: 10.1016/j.fm.2013.02.006

Sebastian J, Muderspach KJ, Kristian BRM, Leggio LL. Structure, function, and protein engineering of GH53 β-1,4-galactanases. In: Glycoside Hydrolases. Academic Press, 2023. P. 295-322

Roy D. Probiotics. Comprehensive Biotechnology (Third Edition). Pergamon, 2019. Vol. 3. P. 649-661

Kozin SV, Kravtsov AA, Kravchenko SV, Ivaschenko LI. Antioxidant and anxiolytic effects of Bifidobacterium adolescentis and Lactobacillus acidophilus under conditions of normobaric hypoxia with hypercapnia. Nutrition issues. 2021; 90(2):63-72. Russian (Козин С. В., Кравцов А. А., Кравченко С. В., Иващенко Л. И. Антиоксидантный и анксиолитический эффекты Bifidobacterium adolescentis и Lactobacillus acidophilus в условиях нормобарической гипоксии с гиперкапнией // Вопросы питания. 2021. Т. 90, № 2. С. 63-72)

Derrien M, Turroni F, Ventura M, van Sinderen D. Insights into endogenous Bifidobacterium species in the human gut microbiota during adulthood. Trends Microbiol. 2022;30(10):940-947. doi: 10.1016/j.tim.2022.04.004

Hidalgo-Cantabrana C, Delgado S, Ruiz L, Ruas-Madiedo P, Sánchez B, Margolles A. Bifidobacteria and their health-promoting effects. Microbiol Spectr. 2017;5(3). doi: 10.1128/microbiolspec.BAD-0010-2016

Muhammad F, Saeed F., Afzaal M, Ikram A, Muhammad Azam MChapter 20. The effect of thermal processing on probiotics stability. In: Advances in Dairy Microbial Products. Woodhead Publishing, 2022. P. 295-302

Quigley EMM. Bifidobacterium animalis spp. Lactis. The Microbiota in Gastrointestinal Pathophysiology. Academic Press. 2017; 3:127-130

Bonfrate L, Di Palo DM, Celano G, Albert A, Vitellio P, De Angelis M, et al. Effects of Bifidobacterium longum BB536 and Lactobacillus rhamnosus HN001 in IBS patients. Eur J Clin Invest. 2020;50(3):e13201. doi: 10.1111/eci.13201

Caviglia GP, Tucci A, Pellicano R, Fagoonee S, Rosso C, Abate ML, et al. Clinical response and changes of cytokines and zonulin levels in patients with diarrhoea-predominant irritable bowel syndrome treated with Bifidobacterium Longum ES1 for 8 or 12 weeks: a preliminary report. J Clin Med. 2020;9(8):2353. doi: 10.3390/jcm9082353

Yang J, Yang H. Antibacterial activity of bifidobacterium breve against clostridioides difficile. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2019; 9: 288-296

Zakharova YV, Levanova LA. Modern ideas about taxonomy, morphological and functional properties of bifidobacteria. Basic and clinical medicine. 2018; 3(1):90-101. Russian (Захарова Ю. В., Леванова Л. А. Современные представления о таксономии, морфологических и функциональных свойствах бифидобактерий // Фундаментальная и клиническая медицина. 2018. Т. 3, № 1. С. 90-101)

Liu M, Gao H, Miao J, Zhang Z, Zheng L, Li F, et al. Helicobacter pylori infection in humans and phytotherapy, probiotics, and emerging therapeutic interventions: a review. Front Microbiol. 2024;14:1330029. doi: 10.3389/fmicb.2023.1330029

Bukharin OV, Ivanova EV, Chaynikova IN, Перунова НБ, Nikiforov IA, Chelpachenko OE, et al. Effect of intestinal microsymbionts on cytokine production in an in vitro system. Medical immunology. 2023; 25(6): 1371-1388. Russian (Бухарин О.В., Иванова Е.В., Чайникова И.Н., Перунова Н. Б., Никифоров И. А., Челпаченко О. Е. и др. Влияние кишечных микросимбионтов на продукцию цитокинов в системе in vitro // Медицинская иммунология. 2023. Т. 25, № 6. C. 1371-1388)

Kozin SV, Kravtsov AA, Kravchenko SV, Ivashchenko LI. Antioxidant and anxiolytic effects of Bifidobacterium adolescentis and Lactobacillus acidophilus under conditions of normobaric hypoxia with hypercapnia. Nutrition issues. 2021; 90(2):63-72. Russian (Козин С. В., Кравцов А. А., Кравченко С. В., Иващенко Л.И.Антиоксидантный и анксиолитический эффекты Bifidobacterium adolescentis и Lactobacillus acidophilus в условиях нормобарической гипоксии с гиперкапнией // Вопросы питания. 2021. Т. 90, № 2. С. 63-72)

Buchta Rosean C, Feng TY, Azar FN, Rutkowski MR. Impact of the microbiome on cancer progression and response to anti-cancer therapies. Adv Cancer Res. 2019;143:255-294. doi: 10.1016/bs.acr.2019.03.005

Fidanza M, Panigrahi P, Kollmann TR. Lactiplantibacillus plantarum-nomad and ideal probiotic. Front. Microbiol. 2021; 12:7122-7136

El Kafsi H, Binesse J, Loux V, Buratti J, Boudebbouze S, Dervyn R, et al. Lactobacillus delbrueckii ssp. lactis and ssp. bulgaricus: a chronicle of evolution in action. BMC Genomics. 2014 May 28;15(1):407. doi: 10.1186/1471-2164-15-407

Wang Z, Osborn LJ. The microbiome and cardiovascular disease: implications in precision medicine. Comprehensive Precision Medicine. Elsevier. 2024. Vol. 5(11). P. 145-168

Poh CL, Khalid K, Lim Y. Probiotics: a solution to the prevention of antimicrobial resistance. In: Antibiotics - Therapeutic Spectrum and Limitations. 1st Edition, 2023. Chapter 23. P. 595-609

Griffiths MW, Tellez AM. Lactobacillus helveticus: the proteolytic system. Front. Microbiol. 2013; 4(30):00030

Taverniti V, Guglielmetti S. Health-promoting properties of lactobacillus helveticus. Front. Microbiol. 2012; 3:392

Nora H, Azghar A, Benkirane C, Bouaamali H, Mouncif M, OU-yahia D, et al. Probiotic properties and antibiotic susceptibility assessment of Streptococcus thermophilus isolates. 2023. URL: https://www.researchgate.net/publication/370834923

Fuhren J, Schwalbe M, Boekhorst J, Rösch C, Schols HA, Kleerebezem M. Dietary calcium phosphate strongly impacts gut microbiome changes elicited by inulin and galacto-oligosaccharides consumption. Microbiome. 2021;9(1):218. doi: 10.1186/s40168-021-01148-0

Al-Baadani HH, Alhotan RA, Al-Abdullatif AA, Alhidary IA, Alharthi AS, Al-Mufarrej SI, et al. The effect of gum arabic supplementation on growth performance, blood indicators, immune response, cecal microbiota, and the duodenal morphology of broiler chickens. Animals (Basel). 2022;12(20):2809. doi: 10.3390/ani12202809