РЕЙТИНГ ЭФФЕКТИВНОСТИ И БЕЗОПАСНОСТИ ЭНТЕРАЛЬНОЙ ДИАБЕТИЧЕСКОЙ СМЕСИ НУТРИЗЕТ Д, СОДЕРЖАЩЕЙ МЕТАБИОТИЧЕСКИЙ КОМПЛЕКС И β-ГЛЮКАНЫ, ПРИ ЕЕ ИСПОЛЬЗОВАНИИ В ПРОГРАММЕ ПИТАТЕЛЬНОЙ ПОДДЕРЖКИ У БОЛЬНЫХ С СЕПСИСОМ НА ОСНОВАНИИ МОНИТОРИНГА ПАРАМЕТРОВ ГОМЕОСТАЗА (СООБЩЕНИЕ 2)


Гирш А.О., Малюк А.И., Щетина А.В., Измайлова Н.А., Быстрицкий С.Л., Степанов С.С.

Аннотация


Цель — выявление рейтинга эффективности и безопасности инновационной энтеральной диабетической смеси Нутризет Д, содержащей метабиотический комплекс и β-глюканы, при ее использовании в послеоперационном периоде в программе питательной поддержки у больных с сепсисом на основании мониторинга параметров гомеостаза.

Материалы и методы. В исследовании, относящемся к открытому проспективному когортному клиническому, участвовали 10 больных с сепсисом, получавшие в послеоперационном периоде энтеральное питание диабетической смесью Нутризет. Определяли критерии недостаточности питания и гомеостаза. Исполняли статистический анализ.

Результаты. Мониторинг энергопотребности пациентов фиксировал ее достоверный регресс за период наблюдения. У больных отмечалась благоприятная динамика по шкале SOFA, улучшение показателей ударного объема сердца (УОС), сердечного выброса (СВ) и сердечного индекса (СИ), креатинина, аланинаминотрансферазы (АлАТ), натрия и международного нормализованного отношения (МНО). Не регистрировалось отличий других проверяемых критериев. У пациентов обнаруживалась комплиментарная переносимость применяемой энтеральной смеси.

Выводы. Использование в послеоперационном периоде энтеральной диабетической смеси Нутризет Д у больных с сепсисом не вызывало вздутия живота и сброса введенной смеси по зонду, что свидетельствовало о ее приемлемой переносимости, всасываемости и перевариваемости.

Применение энтеральной диабетической смеси Нутризет Д у больных с сепсисом давало возможность не только подлинно уменьшить энергопотребность и недостаточность органов, редуцировать дисбиоз кишечника, содержание АлАт и креатинина в крови, улучшить МНО, УОС, СВ и СИ, но и предотвращать неблагоприятную кинетику альбумина, трансферрина и абсолютного числа лимфоцитов, а также расстройства метаболизма углеводов, соотношения глобулярного и плазменного компонентов крови, электролитного состава, гемостаза, деятельности почек и печени.

Осуществленный мониторинг параметров гомеостаза у больных с сепсисом свидетельствует о комплиментарном рейтинге эффективности и безопасности инновационной энтеральной диабетической смеси Нутризет Д при ее использовании в программе питания в послеоперационном периоде.


Ключевые слова


энтеральная смесь; метабиотический комплекс; β-глюканы

Полный текст:

Full Text PDF

Литература


Parenteral and enteral nutrition: national leadership. Edited by SS. Petrikov. Moscow: GEOTAR, 2023. 1166 p. Russian (Парентеральное и энтеральное питание: национальное руководство / под ред. С. С. Петрикова. Москва: ГЭОТАР, 2023. 1166 с.)

Sepsis: classification, clinical and diagnostic concept and treatment: a practical guide. Edited by Gelfand BR. 4th edition, supplemented and revised. Moscow: MIA, 2017. 214 p. Russian (Сепсис: классификация, клинико-диагностическая концепция и лечение: практическое руководство / под ред. Б. Р. Гельфанда. 4-е изд., доп. и перераб. Москва : МИА. 2017. 214 с.)

Singer P, Blaser AR, Berger MM, Calder PC, Casaer M, Hiesmayr M, et al. ESPEN practical and partially revised guideline: clinical nutrition in the intensive care unit. Clin Nutr. 2023;42(9):1671-1689. doi: 10.1016/j.clnu.2023.07.011

Liu Y, Guo Y, Hu S, Wang Y, Zhang L, Yu L, et al. Analysis of the dynamic changes in gut microbiota in patients with different severity in sepsis. BMC Infect Dis. 2023;23(1):614. doi: 10.1186/s12879-023-08608-y

Chapman MJ, Nguyen NQ, Deane AM. Gastrointestinal dysmotility: evidence and clinical management. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2013; 16(2):209-216

Mazurok VA, Golovkin AS, Bautin AE, Gorelov II, Belikov VL, Slivin OA. Gastrointestinal tract in critical conditions: the first suffers, the last to whom attention is paid. Bulletin of Intensive Care. 2016; (2): 28-37. Russian (Мазурок В. А., Головкин А. С., Баутин А. Е., Горелов И. И., Беликов В. Л., Сливин О. А. Желудочно-кишечный тракт при критических состояниях: первый страдает, последний, кому уделяют внимание // Вестник интенсивной терапии. 2016. № 2. С. 28-37)

Leaphart CL, Tepas JJ. The gut is a motor of organ system dysfunction. Surgery. 2007; 141:563-569

Norman K, Pirlich M, Schulzke JD, Smoliner C, Lochs H, Valentini L, et al. Increased intestinal permeability in malnourished patients with liver cirrhosis. Eur. J. Clin. Nutr. 2012; 66(10): 1116–1119

Singer P, Blaser AR, Berger MM, Alhazzani W, Calder PC, Casaer MP, et al. ESPEN guideline on clinical nutrition in the intensive care unit. Clin Nutr. 2019;38(1):48-79. doi: 10.1016/j.clnu.2018.08.037

Intensive care: national guidelines. Edited by Zabolotskikh IB, Protsenko DN. 2nd edition, supplemented and revised. Moscow: GEOTAR-Media, 2021. 2208 p. Russian (Интенсивная терапия: национальное руководство / под ред. И. Б. Заболотских, Д. Н. Проценко. 2-е изд, перераб. и доп.. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2021. 2208 с.)

Leiderman IN, Gritsan AI, Zabolotskikh IB, Lebedinsky KM, Krylov KYu, Mazurok VA, et al. Metabolic monitoring and nutritional support during long-term artificial ventilation of the lungs. Methodological recommendations of the All-Russian public organization "Federation of anesthesiologists and resuscitators". Anesthesiology and resuscitation. 2022; 5:6-17. https://doi.org/10.17116/anaesthesiology20220516. Russian (Лейдерман И. Н., Грицан А. И., Заболотских И. Б., Лебединский К. М., Крылов К. Ю., Мазурок В. А. и др. Метаболический мониторинг и нутритивная поддержка при проведении длительной искусственной вентиляции легких. Методические рекомендации Общероссийской общественной организации «Федерация анестезиологов и реаниматологов» // Анестезиология и реаниматология. 2022. № 5. С. 6–17. https://doi.org/10.17116/anaesthesiology20220516)

Beloborodova NV. Microbiota metabolism under critical conditions (review and postulates). General resuscitation. 2019; 15(6):62-79. Russian (Белобородова Н. В. Метаболизм микробиоты при критических состояниях (обзор и постулаты) // Общая реаниматология. 2019. Т.15, № 6. С. 62-79)

Battaglini D, Robba C, Fedele A, Trancǎ S, Sukkar SG, Di Pilato V, et al. The Role of dysbiosis in critically ill patients with COVID-19 and acute respiratory distress syndrome. Front Med (Lausanne). 2021;8:671714. doi: 10.3389/fmed.2021.671714

Liu Y, Guo Y, Hu S, Wang Y, Zhang L, Yu L, et al. Analysis of the dynamic changes in gut microbiota in patients with different severity in sepsis. BMC Infect Dis. 2023;23(1):614. doi: 10.1186/s12879-023-08608-y

Chapman MJ, Nguyen NQ, Deane AM. Gastrointestinal dysmotility: evidence and clinical management. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2013; 16: 209-216

Girsch AO, Mishchenko SV, Stepanov SS, Klementyev AV, Leiderman IN, Stukanov MM, et al. Organ and system dysfunctions in patients with acute respiratory distress syndrome. Polytrauma. 2022; (2): 18-25. Russian (Гирш А. О., Мищенко С. В., Степанов С. С., Клементьев А. В., Лейдерман И. Н., Стуканов М. М., и др. Дисфункции органов и систем у больных с острым респираторным дистресс-синдромом // Политравма. 2022. № 2. С. 18-25)

Girsch AO, Mishchenko SV, Stepanov SS, Klementyev AV, Leiderman IN, Stukanov MM, et al. Correlation of multiple organ dysfunction syndromes and hypermetabolism in patients with acute respiratory distress syndrome of varying severity with the implementation of diverse nutritional support. Polytrauma. 2022; (3): 6-15. Russian (Гирш А. О., Мищенко С. В., Степанов С. С., Клементьев А. В., Лейдерман И. Н., Стуканов М. М. и др. Соотнесенность синдромов полиорганной недостаточности и гиперметаболизма у пациентов с острым респираторным дистресс-синдромом различной степени тяжести при реализации разноплановой питательной поддержки // Политравма. 2022. № 3. С. 6-15)

Leiderman IN, Gritsan AI, Zabolotskikh IB, Lomidze SV, Mazurok VA, Nekhaev IV, et al. Perioperative nutritional support. Clinical recommendations. Bulletin of Intensive Care named after A.I. Saltanov. 2018; (3): 3-21. Russian (Лейдерман И. Н., Грицан А. И., Заболотских И. Б., Ломидзе С. В., Мазурок В. А., Нехаев И. В. и др. Периоперационная нутритивная поддержка. Клинические рекомендации // Вестник интенсивной терапии имени А. И. Салтанова. 2018. № 3. С. 3–21)

Zandalasini M, Pelizzari L, Ciardi G, Giraudo D, Guasconi M, Paravati S, et al. Bowel dysfunctions after acquired brain injury: a scoping review. Front Hum Neurosci. 2023;17:1146054. doi: 10.3389/fnhum.2023.1146054

Evseev MA, Fomin VS, Nikitin VE. Pathogenetic aspects of the development of enteral insufficiency syndrome in the postoperative period. Annals of Surgery. 2018; 23(1):5-13. Russian (Евсеев М. А., Фомин В. С., Никитин В. Е. Патогенетические аспекты развития синдрома энтеральной недостаточности в послеоперационном периоде // Анналы хирургии. 2018. Т. 23, № 1. С. 5-13)

Baleev MS, Ryabkov MG, Perlmutter OA, Fraerman AP, Sheiko GE, Smirnov II, et al. Digestive tract dysfunction in the acute period of spinal cord injury (literature review). Polytrauma. 2021; (3): 82-90. Russian (Балеев М. С., Рябков М. Г., Перльмуттер О. А., Фраерман А. П., Шейко Г. Е., Смирнов И. И. и др. Дисфункция пищеварительного тракта в остром периоде травмы спинного мозга (обзор литературы) // Политравма. 2021. № 3. С. 82-90)

Shenderov BA, Tkachenko EI, Lazebnik LB, Ardatskaya MD, Sinitsa AV, Zakharchenko MM. Metabiotics is a new technology for the prevention and treatment of diseases associated with microecological disorders in the human body. Experimental and clinical gastroenterology. 2018;151(3):83-92. Russian (Шендеров Б. А., Ткаченко Е. И., Лазебник Л. Б., Ардатская М. Д., Синица А. В., Захарченко М. М. Метабиотики - новая технология профилактики и лечения заболеваний, связанных с микроэкологическими нарушениями в организме человека // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2018. Т. 151, № 3. С. 83-92)

Shenderov BA, Tkachenko EI, Zakharchenko MM, Sinitsa AV. Metabiotics: prospects, challenges and opportunities. Medical alphabet. 2019; 2(13):43-48. Russian (Шендеров Б. А., Ткаченко Е. И., Захарченко М. М., Синица А. В. Метабиотики: перспективы, вызовы и возможности // Медицинский алфавит. 2019. Т.2, № 13. С. 43-48)

Salminen S, Collado MC, Endo A, Hill C, Lebeer S, Quigley EMM, et al. The international scientific Association of Probiotics and Prebiotics (ISAPP) consensus statement on the definition and scope of postbiotics. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2021; 18(9): 649-667. doi: 10.1038/s41575-022-00628-4

Vinderola G, Sanders ME, Salminen S. The concept of postbiotics. Foods. 2022; 11(8):1077

Ma L, Tu H, Chen T. Postbiotics in human health: a narrative review. Nutrients. 2023;15(2):291

Cuevas-González PF, Liceaga AM, Aguilar-Toalá JE. Postbiotics and paraprobiotics: from concepts to applications. Food Res Int. 2020; 136:109502

Plotnikova EY, Gracheva TY. Metabiotics - a comprehensive solution to dysbiotic problems in various diseases. Russian Medical Journal. 2018; 26(5-2): 72-76. Russian (Плотникова Е. Ю., Грачева Т. Ю. Метабиотики - комплексное решение дисбиотических проблем при различных заболеваниях // РМЖ. 2018. Т.26, № 5-2. С. 72-76)

Adak A, Han G. Understanding the gut microbiota and its functionality. Cell Mol. Life Sci. 2019;. 76:473-493

Shenderov BA. Metabiotics. Cham: Springer International Publishing, 2020. 123 р.

Aller JM, Crowley SM, Low HT. Darmepithel: zentraler koordinator der immunität der schleimhaut. Die Trends von Immunol. 2019; 39:677-696

Victoria M, Elena VB, Amparo GN, María JA, Adriana GV, Irene AC, et al. Gut microbiota alterations in critically ill older patients: a multicenter study. BMC Geriatr. 2022;22(1):373. doi: 10.1186/s12877-022-02981-0

Agudelo-Ochoa GM, Valdes-Duque BE, Giraldo-Giraldo NA. Darm-mikrobiota-profile bei kritisch kranken patienten, potentielle biomarker und variable des sepsis-risikos. Darmkeime. 2020; 12:1707610

Probiotic Bacteria Lysates - Raw Materials for Functional Nutrition: A Literature Review on the Topic. 2020. 30 p. Access mode: www.contract.artlifе.ru. Russian (Лизаты пробиотических бактерий - сырье для функционального питания: литературный обзор по теме. 2020. 30 с. Режим доступа: www.contract.artlifе.ru)

Qi X, Li Y, Fang C, Jia Y, Chen M, Chen X, et al. The associations between dietary fibers intake and systemic immune and inflammatory biomarkers, a multi-cycle study of NHANES 2015-2020. Front Nutr. 2023;10:1216445. doi: 10.3389/fnut.2023.1242115

Ashique S, Mishra N, Garg A, Sibuh BZ, Taneja P, Rai G, et al. Recent updates on correlation between reactive oxygen species and synbiotics for effective management of ulcerative colitis. Front Nutr. 2023;10:1126579. doi: 10.3389/fnut.2023.1126579

Alekhine SA, Bezhina EN, Firsova T, Nazarenko DP. The nature of ischemic and reperfusion injuries of small intestinal and pancreatic tissues as a basis for differences in pharmacological correction approaches. Innova. 2022; 2 (27):6-10. Russian (Алехин С. А., Бежина Е. Н., Фирсова Т. И., Назаренко Д. П. Характер ишемических и реперфузионных повреждений тканей тонкого кишечника и поджелудочной железы как базис различий в подходах фармакологической коррекции // Innova. 2022. №2 (27). С. 6-10)

Xu M, Ling F, Li J, Chen Y, Li S, Cheng Y, et al. Oat beta-glucan reduces colitis by promoting autophagy flux in intestinal epithelial cells via EPHB6-TFEB axis. Front Pharmacol. 2023;14:1189229. doi: 10.3389/fphar.2023.1189229

Holscher HD. Dietary fiber and prebiotics and the gastrointestinal microbiota. Gut Microbes. 2017; 8(2):172-184

Gill SK, Rossi M, Bajka B, Whelan K. Dietary fibre in gastrointestinal health and disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2021;18(2):101-116. doi: 10.1038/s41575-020-00375-4

Spagnuolo R, Cosco C, Mancina RM, Ruggiero G, Garieri P, Cosco V, et al. Beta-glucan, inositol and digestive enzymes improve quality of life of patients with inflammatory bowel disease and irritable bowel syndrome. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2017;21(2 Suppl):102-107

Błaszczyk K, Wilczak J, Harasym J, et al. Wirkung von nieder- und hochmolekularem Beta-Glucan hafer auf oxidativen stress und antioxidativen schutz in der milz von rattenmit LPS-induziertem enterit. Lebensmittelhydrokolloid. 2015; 51: 272-280

Venter C, Meyer RW, Greenhawt M, Pali-Schöll I, Nwaru B, Roduit C, et al. Role of dietary fiber in promoting immune health-An EAACI position paper. Allergy. 2022;77(11):3185-3198. doi: 10.1111/all.15430

Beukema M, Faas MM, and de Vos P. The effects of different dietary fiber pectin structures on the gastrointestinal immune barrier: impact via gut microbiota and direct effects on immune cells. Exp. Mol. Med. 2020; 52:1364-1376

Zhuetal F. A critical review on production and industrial applications of beta glucans. Food Hydrocolloids. 2016; 52:275–288

Zou Y, Liao D, Huang H, Li T, Chi H. A systematic review and meta-analysis of beta-glucan consumption on glycemic control in hypercholesterolemic individuals. Int J Food Sci Nutr. 2015;66(4):355-362. doi: 10.3109/09637486.2015.1034250

Singh RP, Bhardwaj A. β-glucans: apotential source formain taining gut microbiota and the immune system. Front. Nutr. 2023; 10:1143682

Dang AT, Marsland BJ. Microbes, metabolites, and the gut-lung axis. Mucosal Immunol. 2019;12(4): 843-850

Xu P, Lv T, Dong S, Cui Z, Luo X, Jia B, et al. Association between intestinal microbiome and inflammatory bowel disease: Insights from bibliometric analysis. Comput Struct Biotechnol J. 2022;20:1716-1725. doi: 10.1016/j.csbj.2022.04.006

Cristofori F, Dargenio VN, Dargenio C, Miniello VL, Barone M, Francavilla R. Anti-inflammatory and immunomodulatory effects of probiotics in gut inflammation: a door to the body. Front Immunol. 2021; 12:578386. doi: 10.3389/fimmu.2021.578386

Liu Y, Wang J, Wu C. Modulation of gut microbiota and immune system by probiotics, pre-biotics, and post-biotics. Front Nutr. 2022; 8:6348-6397

Ashique S, Mishra N, Garg A, Sibuh BZ, Taneja P, Rai G, e al. Recent updates on correlation between reactive oxygen species and synbiotics for effective management of ulcerative colitis. Front Nutr. 2023;10:1126579. doi: 10.3389/fnut.2023.1126579

Mashkovsky MD. Medicines. Moscow: New wave. 2020. 1216 p. Russian (Машковский М. Д. Лекарственные средства. Москва : Новая волна. 2020. 1216 с.)

Yaroshetsky AI, Gritsan AI, Avdeev SN, Vlasenko AV, Eremenko AA, Zabolotskikh IB, et al. Diagnosis and intensive care of acute respiratory distress syndrome. Clinical recommendations of the All-Russian public organization Federation of Anesthesiologists and Resuscitators. Anesthesiology and resuscitation. 2020; (2): 5-39. Russian (Ярошецкий А. И., Грицан А. И., Авдеев С. Н., Власенко А. В., Еременко А. А., Заболотских И. Б и др. Диагностика и интенсивная терапия острого респираторного дистресс-синдрома. Клинические рекомендации Общероссийской общественной организации Федерация анестезиологов и реаниматологов // Анестезиология и реаниматология. 2020. № 2. С. 5-39)

Girsch AO, Mishchenko SV, Stepanov SS, Klementyev AV, Chernenko SV. Nutritional failure variability in patients with acute respiratory distress syndrome of varying severity (Report 1). Polytrauma. 2022; (4): 6-14. Russian (Гирш А. О., Мищенко С. В., Степанов С. С., Клементьев А. В., Черненко С. В. Вариабельность питательной недостаточности у пациентов с острым респираторным дистресс-синдромом различной степени тяжести (Сообщение 1) // Политравма. 2022. № 4. С. 6-14)

Borovikov VP. Popular introduction to modern data analysis in the STATISTICS system. Moscow: Hotline - Telecom, 2013. 288 p. Russian (Боровиков В. П. Популярное введение в современный анализ данных в системе STATISTICA. Москва: Горячая линия - Телеком, 2013. 288 с.)

Girsch AO, Maksimishin SV. Diagnostic content of nutritional status data in patients with acute respiratory distress syndrome during nutritional support. Polytrauma. 2019; (2):11-18. Russian (Гирш А. О., Максимишин С. В. Диагностическая содержательность данных нутритивного статуса у пациентов с острым респираторным дистресс-синдромом при проведении питательной поддержки // Политравма. 2019. № 2. С. 11-18)

Desaka N, Ota C, Nishikawa H, Yasuda K, Ishii N, Bito T, et al. Streptococcus thermophilus extends lifespan through activation of DAF-16-mediated antioxidant pathway in Caenorhabditis elegans. J Clin Biochem Nutr. 2022;70(1):7-13. doi: 10.3164/jcbn.21-56

Herviou P, Balvay A, Bellet D, Bobet S, Maudet C, Staub J, et al. Transfer of the integrative and conjugative element ICESt3 of Streptococcus thermophilus in physiological conditions mimicking the human digestive ecosystem. Microbiol Spectr. 2023;11(3):e0466722. doi: 10.1128/spectrum.04667-22

Salini F, Iacumin L, Comi G, Dicks LMT. Thermophilin 13: in silico analysis provides new insight in genes involved in bacteriocin production. Microorganisms. 2023;11(3):611. doi: 10.3390/microorganisms11030611

Roux E, Nicolas A, Valence F, Siekaniec G, Chuat V, Nicolas J, et al. The genomic basis of the Streptococcus thermophilus health-promoting properties. BMC Genomics. 2022;23(1):210. doi: 10.1186/s12864-022-08459-y

Kang X, Liang H, Luo Y, Li Z, He F, Han X, et al. Streptococcus thermophilus MN-ZLW-002 can inhibit pre-adipocyte differentiation through macrophage activation. Biol Pharm Bull. 2021;44(3):316-324. doi: 10.1248/bpb.b20-00335

Shimosato T, Tohno M, Sato T, Nishimura J, Kawai Y, Saito T, et al. Identification of a potent immunostimulatory oligodeoxynucleotide from Streptococcus thermophilus lacZ. Anim Sci J. 2009;80(5):597-604. doi: 10.1111/j.1740-0929.2009.00680.x

Dargahi N, Johnson J. Streptococcus thermophiles alters the expression of genes associated with innate and adaptive immunity in human peripheral blood mononuclear cells. PLoS ONE. 2020; 15(2): 228531-41

Dargahi N, Johnson J, Donkor O, Vasiljevic T, Apostolopoulos V. Immunomodulatory effects of Streptococcus thermophilus on U937 monocyte cell cultures. Journal of Functional Foods. 2018; 49:241-249

Jensen H, Drømtorp SM, Axelsson L, Grimmer S. Immunomodulation of monocytes by probiotic and selected lactic Acid bacteria. Probiotics Antimicrob Proteins. 2015;7(1):14-23. doi: 10.1007/s12602-014-9174-2

Asarat M, Apostolopoulos V, Vasiljevic T, Donkor O. Short-chain fatty acids regulate cytokines and Th17/treg cells in human peripheral blood mononuclear cells in vitro. Immunological Investigations. 2016; 45(3):205-222

Rossi F, Marzotto M, Cremonese S, Rizzotti L, Torriani S. Diversity of Streptococcus thermophilus in bacteriocin production; inhibitory spectrum and occurrence of thermophilin genes. Food Microbiol. 2013;35(1):27-33. doi: 10.1016/j.fm.2013.02.006

Sebastian J, Muderspach KJ, Kristian BRM, Leggio L Structure, function, and protein engineering of GH53 β-1,4-galactanases. In: Glycoside Hydrolases. Academic Press. 2023. P. 295-322

Roy D. Probiotics. Comprehensive Biotechnology (Third Edition). Pergamon. 2019. Vol. 3. P. 649-661

Kozin SV, Kravtsov AA, Kravchenko SV, Ivaschenko LI. Antioxidant and anxiolytic effects of Bifidobacterium adolescentis and Lactobacillus acidophilus under conditions of normobaric hypoxia with hypercapnia. Nutrition issues. 2021; 90(2):63-72. Russian (Козин С. В., Кравцов А. А., Кравченко С. В., Иващенко Л. И. Антиоксидантный и анксиолитический эффекты Bifidobacterium adolescentis и Lactobacillus acidophilus в условиях нормобарической гипоксии с гиперкапнией // Вопросы питания. 2021. Т. 90, № 2. С. 63-72)

Derrien M, Turroni F, Ventura M, van Sinderen D. Insights into endogenous Bifidobacterium species in the human gut microbiota during adulthood. Trends Microbiol. 2022;30(10):940-947. doi: 10.1016/j.tim.2022.04.004

Hidalgo-Cantabrana C, Delgado S, Ruiz L, Ruas-Madiedo P, Sánchez B, Margolles A. Bifidobacteria and their health-promoting Effects. Microbiol Spectr. 2017;5(3): 756-768. doi: 10.1128/microbiolspec

Muhammad F, Saeed F, Afzaal M. The effect of thermal processing on probiotics stability. In: Advances in Dairy Microbial Products. Woodhead Publishing. 2022. Vol. 7. P. 295-302

Quigley EMM. Bifidobacterium animalis spp. Lactis. The Microbiota in Gastrointestinal Pathophysiology. Academic Press. 2017; 3:127-130

Bonfrate L, Di Palo DM, Celano G, Albert A, Vitellio P, De Angelis M, et al. Effects of Bifidobacterium longum BB536 and Lactobacillus rhamnosus HN001 in IBS patients. Eur J Clin Invest. 2020;50(3):e13201. doi: 10.1111/eci.13201

Caviglia GP, Tucci A, Pellicano R, Fagoonee S, Rosso C, Abate ML, et al. Clinical response and changes of cytokines and zonulin levels in patients with diarrhoea-predominant irritable bowel syndrome treated with Bifidobacterium Longum ES1 for 8 or 12 weeks: a preliminary report. J Clin Med. 2020;9(8):2353. doi: 10.3390/jcm9082353

Yang J, Yang H. Antibacterial activity of bifidobacterium breve against clostridioides difficile. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2019; 9:288-296

Zakharova YuV, Levanova LA. Modern ideas about taxonomy, morphological and functional properties of bifidobacteria. Basic and clinical medicine. 2018; 3(1): 90-101. Russian (Захарова Ю. В., Леванова Л. А. Современные представления о таксономии, морфологических и функциональных свойствах бифидобактерий // Фундаментальная и клиническая медицина. 2018. Т. 3, № 1. С. 90-101)

Liu M, Gao H, Miao J, Zhang Z, Zheng L, Li F, et al. Helicobacter pylori infection in humans and phytotherapy, probiotics, and emerging therapeutic interventions: a review. Front Microbiol. 2024;14:1330029. doi: 10.3389/fmicb.2023.1330029

Yang J, Yang H. Antibacterial activity of bifidobacterium breve against clostridioides difficile. Front Cell Infect Microbiol. 2019; 7(9):288-296

Bukharin OV, Ivanova EV, Chaynikova IN, Perunova NB, Nikiforov IA, Chelpachenko OE, et al. Effect of intestinal microsymbionts on cytokine production in an in vitro system. Medical immunology. 2023; 25(6):1371-1388. Russian (Бухарин О. В., Иванова Е. В., Чайникова И. Н., Перунова Н. Б., Никифоров И. А., Челпаченко О. Е. и др. Влияние кишечных микросимбионтов на продукцию цитокинов в системе in vitro // Медицинская иммунология. 2023. Т. 25, № 6. Р. 1371-1388)

Kozin SV, Kravtsov AA, Kravchenko SV, Ivaschenko LI. Antioxidant and anxiolytic effects of Bifidobacterium adolescentis and Lactobacillus acidophilus under conditions of normobaric hypoxia with hypercapnia. Nutrition issues. 2021; 90(2): 63-72. Russian (Козин С. В., Кравцов А. А., Кравченко С.В., Иващенко Л. И. Антиоксидантный и анксиолитический эффекты Bifidobacterium adolescentis и Lactobacillus acidophilus в условиях нормобарической гипоксии с гиперкапнией // Вопросы питания. 2021. Т. 90, № 2. С. 63-72)

Buchta Rosean C, Feng TY, Azar FN, Rutkowski MR. Impact of the microbiome on cancer progression and response to anti-cancer therapies. Adv Cancer Res. 2019;143:255-294. doi: 10.1016/bs.acr.2019.03.005

Fidanza M, Panigrahi P, Kollmann TR. Lactiplantibacillus plantarum-nomad and ideal probiotic. Front. Microbiol. 2021; 12: 7122-71236

El Kafsi H, Binesse J, Loux V, Buratti J, Boudebbouze S, Dervyn R, et al. Lactobacillus delbrueckii ssp. lactis and ssp. bulgaricus: a chronicle of evolution in action. BMC Genomics. 2014;15(1):407. doi: 10.1186/1471-2164-15-407

Wang Z, Osborn LJ. The microbiome and cardiovascular disease: implications in precision medicine. Comprehensive Precision Medicine.2024. 5(11):145-168

Poh CL, Khalid K, Lim Y. Probiotics: a solution to the prevention of antimicrobial resistance. In: Developments in Microbiology. Antibiotics - Therapeutic Spectrum and Limitations. 2023. Vol. 23. P. 595-609

Bonfrate L, Di Palo DM, Celano G, Albert A, Vitellio P, De Angelis M, et al. Effects of Bifidobacterium longum BB536 and Lactobacillus rhamnosus HN001 in IBS patients. Eur J Clin Invest. 2020;50(3):e13201. doi: 10.1111/eci.13201

Buchta Rosean C, Feng TY, Azar FN, Rutkowski MR. Impact of the microbiome on cancer progression and response to anti-cancer therapies. Adv Cancer Res. 2019;143:255-294. doi: 10.1016/bs.acr.2019.03.005

Griffiths MW, Tellez AM. Lactobacillus helveticus: the proteolytic system. Front. Microbiol. 2013; 4(30):00030

Taverniti V, Guglielmetti S. Health-promoting properties of Lactobacillus helveticus. Front. Microbiol. 2012; 3:392

Hamdaoui N, Azghar A, Benkirane C, Bouaamali H, Mohamed M, Ou-yahia D, et al. Probiotic properties, antioxidant potential, bile salts tolerance and antibiotic susceptibility assessment of streptococcus thermophilus isolates. Palestinian Medical and Pharmaceutical Journal. 2024; 9(3):Article 6.

Available at: https://doi.org/10.59049/2790-0231.1223


Статистика просмотров

Загрузка метрик ...

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.