ВЛИЯНИЕ ОКИСЛЕННОГО ДЕКСТРАНА НА СПАЕЧНЫЙ ПРОЦЕСС У КРЫС


Ким Л.Б., Путятина А.Н., Русских Г.С., Комков Н.А.

Аннотация


На сегодняшний день не существует идеальных средств для лечения и профилактики спаечной болезни брюшины у пациентов после оперативного вмешательства. Имеющиеся в наличии средства малодоступны в силу дороговизны либо обладают побочными эффектами, которые ограничивают их широкое использование. Поэтому поиск новых средств является актуальной проблемой не только для хирургии, но и смежных специальностей.

Цель исследования – изучить влияние окисленного декстрана на содержание отдельных компонентов внеклеточного матрикса у крыс при моделировании спаечного процесса.

Материалы и методы. Исследование выполняли на 50 крысах-самцах Wistar. Моделировали спаечный процесс скарификацией париетальной брюшины и сальника после срединной лапаротомии. Интактные животные составили группу I, крысы после оперативного вмешательства (лапаротомия + скарификация брюшины) – группу II. Крысам группы III после оперативного вмешательства в брюшную полость однократно вводили 2 мл 5%-ного раствора окисленного декстрана (40 кДа); животным группы IV – 2 мл физиологического раствора. В сыворотке крови на 7, 14, 21-е сутки измеряли содержание общих и сульфатированных гликозаминогликанов (оГАГ и сГАГ), белково-связанного гидроксипролина (белГОП), активность матриксных металлопротеиназ (ММП).

Результаты. У крыс группы II отмечено повышенное содержание оГАГ, сГАГ, белГОП во все периоды спаечного процесса и активация ММП на 21-е сутки относительно данных группы I. В группе III снижено содержание оГАГ, белГОП по мере развития спаечного процесса. При этом увеличение содержания сГАГ и снижение оГАГ на 21-е сутки позволяет допустить уменьшение гиалуронана. В группе IV содержание белГОП и оГАГ было выше во все периоды спаечного процесса, активность ММП – на 7-е сутки относительно данных группы III.

Заключение. Введение окисленного декстрана после оперативного вмешательства привело к снижению содержания белГОП и оГАГ, что может служить проявлением антифибротического эффекта окисленного декстрана.


Ключевые слова


послеоперационные спайки; окисленный декстран; гидроксипролин; коллаген; гликозаминогликаны; внеклеточный матрикс; матриксные металлопротеиназы; сыворотка крови

Полный текст:

Full Text PDF

Литература


Blackwell RH, Kothari AN, Shah A, Gange W, Quek ML, Luchette FA, et al. Adhesive bowel obstruction following urologic surgery: improved outcomes with early intervention. Curr Urol. 2018; 11(4): 175-181. DOI: 10.1159/000447215

Stommel MWJ, Ten Broek RPG, Strik C, Slooter GD, Verhoef C, Grünhagen DJ, et al. Multicenter observational study of adhesion formation after open- and laparoscopic surgery for colorectal cancer. Ann Surg. 2018; 267(4): 743-748. DOI: 10.1097/SLA.0000000000002175

Chousleb E, Shuchleib S, Chousleb A. Laparoscopic management of intestinal obstruction. Surg Laparosc Endosc Percutan Tech. 2010; 20(5): 348-350. DOI: 10.1097/SLE.0b013e3181f5b7fc

Birchak IV, Borsuk OA. Peculiarities of adhesion process prevention following laparoscopic operations in gynecology. Deutscher Wissenschaftsherold. 2019; (1): 23-25. DOI:10.19221/201915

van den Beukel BA, de Ree R, van Leuven S, Bakkum EA, Strik C, van Goor H, et al. Surgical treatment of adhesion-related chronic abdominal and pelvic pain after gynaecological and general surgery: a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2017; 23(3): 276-288. DOI: 10.1093/humupd/dmx004

Lundorff P, Brölmann H, Koninckx PR, Mara M, Wattiez A, Wallwiener M, et al. Anti-adhesions in gynaecology expert panel (‘ANGEL’). Predicting formation of adhesions after gynaecological surgery: development of a risk score. Arch Gynecol Obstet. 2015; 292(4): 931-938. DOI: 10.1007/s00404-015-3804-0

ten Broek RP, Bakkum EA, Laarhoven CJ, van Goor H. Epidemiology and prevention of postsurgical adhesions revisited. Ann Surg. 2016; 263(1): 12-19. DOI: 10.1097/SLA.0000000000001286

Beyene RT, Kavalukas SL, Barbul A. Intra-abdominal adhesions: Anatomy, physiology, pathophysiology, and treatment. Curr Probl Surg. 2015; 52(7): 271-319. DOI: 10.1067/j.cpsurg.2015.05.001

Christodoulidis G, Tsilioni I, Spyridakis ME, Kiropoulos T, Oikonomidi S, Koukoulis G, et al. Matrix metaloproteinase-2 and -9 serum levels as potential markers of intraperitoneal adhesions. J. Invest. Surg. 2013; 26(3): 134-140. DOI: 10.3109/08941939.2012.730599

Tang J, Xiang Z, Bernards MT, Chen S. Peritoneal adhesions: Occurrence, prevention and experimental models. Acta Biomater. 2020; 116: 84-104. DOI: 10.1016/j.actbio.2020.08.036

Herrick SE, Wilm B. Post-surgical peritoneal scarring and key molecular mechanisms. Biomolecules. 2021; 11(5): 692. DOI: 10.3390/biom11050692

van Steensel S, van den Hil LCL, Schreinemacher MHF, Ten Broek RPG, van Goor H, Bouvy ND. Adhesion awareness in 2016: An update of the national survey of surgeons. PLoS One. 2018; 13(8): e0202418. DOI: 10.1371/journal.pone.0202418

Tsuji S, Takahashi K, Yomo H, Fujiwara M, Kita N, Takebayashi K, et al. Effectiveness antiadhesion barriers in preventing adhesion after myomectomy in patients with uterine leiomyoma. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2005; 123(2): 244-248. DOI: 10.1016/j.ejogrb.2005.04.012

Karpov MA, Shkurupy VA, Troitskii AV. The study of efficiency of the approach to prevent the adhesions in the abdominal cavity of rats. Bull Exp Biol Med. 2021; 171(4): 416-420. DOI: 10.1007/s10517-021-05240-1

Klyatskin SA, Lifshits RI. Determination of glycosaminoglycans by the orcin method in the blood of patients. Lab delo. 1989; (10): 51-53. Russian (Кляцкин С. А., Лифшиц Р. И. Определение гликозаминогликанов орциновым методом в крови больных //Лабораторное дело. 1989. № 10. С. 51-53)

Oke SL, Hurtig MB, Keates RA, Wright JR, Lumsden JH. Assessment of three variations of the 1,9-dimethylmethylene blue assay for measurement of sulfated glycosaminoglycan concentrations in equine synovial fluid. Am J Vet Res. 2003; 64(7): 900-906. DOI: 10.2460/ajvr.2003.64.900

Sharaev PN, Strelkov NS, Kil’diyarova RR, Butolin EG, Ozhegov AM. Connective tissue in childhood. Izhevsk: Izhevsk State Medical Academy, 2005. 1144 р. Russian (Шараев П. Н., Стрелков Н. С., Кильдиярова Р. Р., Бутолин Е. Г., Ожегов А. М. Соединительная ткань в детском возрасте. Ижевск: Ижевск. гос. мед. акад., 2005. 144 с.)

Poteryaeva ON, Russkikh GS, Chernysheva AS, Mokrushnikov PV. Method for determining the activity of matrix metalloproteinases in serum. Journal of Siberian Medical Sciences. 2010; (6): 9. Russian (Потеряева О. Н., Русских Г. С., Чернышова А. С., Мокрушников П. В. Метод определения активности матриксных металлопротеиназ в сыворотке крови //Медицина и образование в Сибири. 2010. № 6. С. 9)

Dairbekov AZh, Tileuberdi ZhT, Kuanyshbaev NE, Turdieva ZR, Shaki D. Prediction and prevention of adhesion formation of the abdominal cavity. ISJM. 2015; 1(1): 22-25

Atta HM. Prevention of peritoneal adhesions: A promising role for gene therapy. World J Gastroenterol. 2011; 17(46): 5049-5058. DOI: 10.3748/wjg.v17.i46.5049

Brochhausen C, Schmitt VH, Planck CN, Rajab TK, Hollemann D, Tapprich C, et al. Current strategies and future perspectives for intraperitoneal adhesion prevention. J Gastrointest Surg. 2012; 16(6): 1256-74. DOI: 10.1007/s11605-011-1819-9

Jones CI, Payne DA, Hayes PD, Naylor AR, Bell PRF, Thompson MM, Goodall AH. The antithrombotic effect of dextran-40 in man is due to enhanced fibrinolysis in vivo. J Vasc Surg. 2008; 48(3): 715-722. DOI: 10.1016/j.jvs.2008.04.008


Статистика просмотров

Загрузка метрик ...

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.