ВЛИЯНИЕ ОКИСЛЕННОГО ДЕКСТРАНА НА СПАЕЧНЫЙ ПРОЦЕСС У КРЫС


Ким Л.Б., Путятина А.Н., Русских Г.С., Комков Н.А.

Аннотация


На сегодняшний день не существует идеальных средств для лечения и профилактики спаечной болезни брюшины у пациентов после оперативного вмешательства. Имеющиеся в наличии средства малодоступны в силу дороговизны либо обладают побочными эффектами, которые ограничивают их широкое использование. Поэтому поиск новых средств является актуальной проблемой не только для хирургии, но и смежных специальностей.

Цель исследования – изучить влияние окисленного декстрана на содержание отдельных компонентов внеклеточного матрикса у крыс при моделировании спаечного процесса.

Материалы и методы. Исследование выполняли на 50 крысах-самцах Wistar. Моделировали спаечный процесс скарификацией париетальной брюшины и сальника после срединной лапаротомии. Интактные животные составили группу I, крысы после оперативного вмешательства (лапаротомия + скарификация брюшины) – группу II. Крысам группы III после оперативного вмешательства в брюшную полость однократно вводили 2 мл 5%-ного раствора окисленного декстрана (40 кДа); животным группы IV – 2 мл физиологического раствора. В сыворотке крови на 7, 14, 21-е сутки измеряли содержание общих и сульфатированных гликозаминогликанов (оГАГ и сГАГ), белково-связанного гидроксипролина (белГОП), активность матриксных металлопротеиназ (ММП).

Результаты. У крыс группы II отмечено повышенное содержание оГАГ, сГАГ, белГОП во все периоды спаечного процесса и активация ММП на 21-е сутки относительно данных группы I. В группе III снижено содержание оГАГ, белГОП по мере развития спаечного процесса. При этом увеличение содержания сГАГ и снижение оГАГ на 21-е сутки позволяет допустить уменьшение гиалуронана. В группе IV содержание белГОП и оГАГ было выше во все периоды спаечного процесса, активность ММП – на 7-е сутки относительно данных группы III.

Заключение. Введение окисленного декстрана после оперативного вмешательства привело к снижению содержания белГОП и оГАГ, что может служить проявлением антифибротического эффекта окисленного декстрана.


Ключевые слова


послеоперационные спайки; окисленный декстран; гидроксипролин; коллаген; гликозаминогликаны; внеклеточный матрикс; матриксные металлопротеиназы; сыворотка крови

Полный текст:

Full Text PDF


Информация о финансировании и конфликте интересов


Работа выполнена без использования внешних источников финансирования. Авторы заявляют об отсутствии явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.


© Ким Л.Б., Путятина А.Н., Русских Г.С., Комков Н.А., 2023

Copyright  
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.


Литература

Blackwell RH, Kothari AN, Shah A, Gange W, Quek ML, Luchette FA, et al. Adhesive bowel obstruction following urologic surgery: improved outcomes with early intervention. Curr Urol. 2018; 11(4): 175-181. DOI: 10.1159/000447215

Stommel MWJ, Ten Broek RPG, Strik C, Slooter GD, Verhoef C, Grünhagen DJ, et al. Multicenter observational study of adhesion formation after open- and laparoscopic surgery for colorectal cancer. Ann Surg. 2018; 267(4): 743-748. DOI: 10.1097/SLA.0000000000002175

Chousleb E, Shuchleib S, Chousleb A. Laparoscopic management of intestinal obstruction. Surg Laparosc Endosc Percutan Tech. 2010; 20(5): 348-350. DOI: 10.1097/SLE.0b013e3181f5b7fc

Birchak IV, Borsuk OA. Peculiarities of adhesion process prevention following laparoscopic operations in gynecology. Deutscher Wissenschaftsherold. 2019; (1): 23-25. DOI:10.19221/201915

van den Beukel BA, de Ree R, van Leuven S, Bakkum EA, Strik C, van Goor H, et al. Surgical treatment of adhesion-related chronic abdominal and pelvic pain after gynaecological and general surgery: a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2017; 23(3): 276-288. DOI: 10.1093/humupd/dmx004

Lundorff P, Brölmann H, Koninckx PR, Mara M, Wattiez A, Wallwiener M, et al. Anti-adhesions in gynaecology expert panel (‘ANGEL’). Predicting formation of adhesions after gynaecological surgery: development of a risk score. Arch Gynecol Obstet. 2015; 292(4): 931-938. DOI: 10.1007/s00404-015-3804-0

ten Broek RP, Bakkum EA, Laarhoven CJ, van Goor H. Epidemiology and prevention of postsurgical adhesions revisited. Ann Surg. 2016; 263(1): 12-19. DOI: 10.1097/SLA.0000000000001286

Beyene RT, Kavalukas SL, Barbul A. Intra-abdominal adhesions: Anatomy, physiology, pathophysiology, and treatment. Curr Probl Surg. 2015; 52(7): 271-319. DOI: 10.1067/j.cpsurg.2015.05.001

Christodoulidis G, Tsilioni I, Spyridakis ME, Kiropoulos T, Oikonomidi S, Koukoulis G, et al. Matrix metaloproteinase-2 and -9 serum levels as potential markers of intraperitoneal adhesions. J. Invest. Surg. 2013; 26(3): 134-140. DOI: 10.3109/08941939.2012.730599

Tang J, Xiang Z, Bernards MT, Chen S. Peritoneal adhesions: Occurrence, prevention and experimental models. Acta Biomater. 2020; 116: 84-104. DOI: 10.1016/j.actbio.2020.08.036

Herrick SE, Wilm B. Post-surgical peritoneal scarring and key molecular mechanisms. Biomolecules. 2021; 11(5): 692. DOI: 10.3390/biom11050692

van Steensel S, van den Hil LCL, Schreinemacher MHF, Ten Broek RPG, van Goor H, Bouvy ND. Adhesion awareness in 2016: An update of the national survey of surgeons. PLoS One. 2018; 13(8): e0202418. DOI: 10.1371/journal.pone.0202418

Tsuji S, Takahashi K, Yomo H, Fujiwara M, Kita N, Takebayashi K, et al. Effectiveness antiadhesion barriers in preventing adhesion after myomectomy in patients with uterine leiomyoma. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2005; 123(2): 244-248. DOI: 10.1016/j.ejogrb.2005.04.012

Karpov MA, Shkurupy VA, Troitskii AV. The study of efficiency of the approach to prevent the adhesions in the abdominal cavity of rats. Bull Exp Biol Med. 2021; 171(4): 416-420. DOI: 10.1007/s10517-021-05240-1

Klyatskin SA, Lifshits RI. Determination of glycosaminoglycans by the orcin method in the blood of patients. Lab delo. 1989; (10): 51-53. Russian (Кляцкин С. А., Лифшиц Р. И. Определение гликозаминогликанов орциновым методом в крови больных //Лабораторное дело. 1989. № 10. С. 51-53)

Oke SL, Hurtig MB, Keates RA, Wright JR, Lumsden JH. Assessment of three variations of the 1,9-dimethylmethylene blue assay for measurement of sulfated glycosaminoglycan concentrations in equine synovial fluid. Am J Vet Res. 2003; 64(7): 900-906. DOI: 10.2460/ajvr.2003.64.900

Sharaev PN, Strelkov NS, Kil’diyarova RR, Butolin EG, Ozhegov AM. Connective tissue in childhood. Izhevsk: Izhevsk State Medical Academy, 2005. 1144 р. Russian (Шараев П. Н., Стрелков Н. С., Кильдиярова Р. Р., Бутолин Е. Г., Ожегов А. М. Соединительная ткань в детском возрасте. Ижевск: Ижевск. гос. мед. акад., 2005. 144 с.)

Poteryaeva ON, Russkikh GS, Chernysheva AS, Mokrushnikov PV. Method for determining the activity of matrix metalloproteinases in serum. Journal of Siberian Medical Sciences. 2010; (6): 9. Russian (Потеряева О. Н., Русских Г. С., Чернышова А. С., Мокрушников П. В. Метод определения активности матриксных металлопротеиназ в сыворотке крови //Медицина и образование в Сибири. 2010. № 6. С. 9)

Dairbekov AZh, Tileuberdi ZhT, Kuanyshbaev NE, Turdieva ZR, Shaki D. Prediction and prevention of adhesion formation of the abdominal cavity. ISJM. 2015; 1(1): 22-25

Atta HM. Prevention of peritoneal adhesions: A promising role for gene therapy. World J Gastroenterol. 2011; 17(46): 5049-5058. DOI: 10.3748/wjg.v17.i46.5049

Brochhausen C, Schmitt VH, Planck CN, Rajab TK, Hollemann D, Tapprich C, et al. Current strategies and future perspectives for intraperitoneal adhesion prevention. J Gastrointest Surg. 2012; 16(6): 1256-74. DOI: 10.1007/s11605-011-1819-9

Jones CI, Payne DA, Hayes PD, Naylor AR, Bell PRF, Thompson MM, Goodall AH. The antithrombotic effect of dextran-40 in man is due to enhanced fibrinolysis in vivo. J Vasc Surg. 2008; 48(3): 715-722. DOI: 10.1016/j.jvs.2008.04.008


Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.